什么是實(shí)時(shí)熒光定量pcr (rt-pcr，qpcr)？實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（pcr）指的是在pcr進(jìn)行的同時(shí)，對(duì)其過(guò)程進(jìn)行監(jiān)測(cè)的能力（即實(shí)時(shí)）。因此，數(shù)據(jù)可在pcr擴(kuò)增過(guò)程中，而非pcr結(jié)束之后，進(jìn)行收集。這為基于pcr的dna和rna定量方法帶來(lái)了革命性的變革。在實(shí)時(shí)熒光定量pcr (qpcr)中，反應(yīng)以循環(huán)中檢測(cè)到目標(biāo)擴(kuò)增的時(shí)間點(diǎn)為特征，而非在一定循環(huán)數(shù)后目標(biāo)分子累計(jì)的擴(kuò)增量。目標(biāo)核酸的起始拷貝數(shù)越高，則會(huì)越快觀察到熒光的顯著增加。相反，終點(diǎn)法檢測(cè)（也稱 “讀板檢測(cè)”）測(cè)量的是pcr循環(huán)結(jié)束時(shí)累計(jì)的pcr產(chǎn)物量。
關(guān)于序列檢測(cè)試劑概述
我們開(kāi)發(fā)了兩種通過(guò)使用序列檢測(cè)系統(tǒng)（sds）儀器進(jìn)行pcr產(chǎn)物檢測(cè)的試劑：
applied biosystems™ taqman® 試劑（也稱“熒光5’核酸酶試劑”）applied biosystems™ sybr™ green i染料試劑taqman方法
taqman方法通過(guò)采用熒光探針在pcr循環(huán)過(guò)程中隨著特定pcr產(chǎn)物的累計(jì)而對(duì)其進(jìn)行檢測(cè)。
使用taqman方法的檢測(cè)類型
taqman方法可用于以下檢測(cè)類型：
定量，包括：
用于rna定量的一步法rt-pcr用于rna定量的兩步法rt-pcrdna/cdna定量等位基因檢測(cè)通過(guò)ipc進(jìn)行的正負(fù)檢測(cè)sybr green i染料試劑
sybr green i染料法采用了applied biosystems™ sybr™ green i染料，一種可以在pcr循環(huán)過(guò)程中隨著pcr產(chǎn)物的累計(jì)而對(duì)其進(jìn)行檢測(cè)的高度特異性雙鏈dna結(jié)合染料。taqman和sybr green i染料法為重要的區(qū)別在于sybr green i染料試劑可以檢測(cè)所有雙鏈dna，包括非特異性的反應(yīng)產(chǎn)物。因此這樣經(jīng)過(guò)特別優(yōu)化的反應(yīng)體系，對(duì)于獲取準(zhǔn)確的結(jié)果而言是非常必要的。
使用sybr green i染料法的檢測(cè)類型
sybr green i染料法可用于以下檢測(cè)類型：
用于rna定量的一步法rt-pcr用于rna定量的兩步法rt-pcrdna/cdna定量taqman試劑
背景
初，使用嵌入式染料進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光pcr (qpcr) 產(chǎn)物定量。但這些染料存在重大缺點(diǎn)，即會(huì)同時(shí)檢測(cè)特異性以及非特異性pcr產(chǎn)物的擴(kuò)增量。
taqman方法的開(kāi)發(fā)
通過(guò)引入基于taq dna聚合酶5’核酸酶活性的熒光標(biāo)記探針，實(shí)時(shí)定量pcr系統(tǒng)得到了顯著提升。這些熒光探針的使用，使得實(shí)時(shí)定量的方法得到了發(fā)展，實(shí)現(xiàn)了僅對(duì)特定擴(kuò)增產(chǎn)物的檢測(cè)。此外，熒光標(biāo)記探針的開(kāi)發(fā)，也免去了用于探針降解分析的pcr反應(yīng)后處理過(guò)程。
taqman序列檢測(cè)方法的工作原理
taqman試劑通過(guò)采用熒光探針在pcr循環(huán)過(guò)程中隨著特定pcr產(chǎn)物的累計(jì)而對(duì)其進(jìn)行檢測(cè)。工作原理：
步驟、過(guò)程
構(gòu)建一段寡核苷酸探針：5’端標(biāo)記熒光染料報(bào)告基團(tuán)，3’端標(biāo)記淬滅染料基團(tuán)。當(dāng)探針保持完整時(shí)，淬滅基團(tuán)的靠近會(huì)通過(guò)空間上的熒光共振能力轉(zhuǎn)移（fret）而顯著降低由報(bào)告染料基團(tuán)發(fā)射的熒光。如果存在目標(biāo)序列，探針便會(huì)在其中一個(gè)引物結(jié)合位點(diǎn)的下游發(fā)生退火，并隨著引物的延伸通過(guò)taq dna聚合酶的5’核酸酶活性，完成切除。探針的切除將會(huì)引起：將報(bào)告染料基團(tuán)和淬滅染料基團(tuán)進(jìn)行分離，增強(qiáng)了報(bào)告染料基團(tuán)的信號(hào)。將探針從目的鏈上去除，使引物繼續(xù)沿模板鏈末端延伸。因此，探針的介入并不會(huì)抑制整個(gè)pcr過(guò)程。每經(jīng)過(guò)一個(gè)循環(huán)，就會(huì)有更多的報(bào)告基因染料分子從各自的探針上切斷，熒光強(qiáng)度會(huì)隨著合成的擴(kuò)增片段數(shù)量的增加而增加。
兩種類型的 taqman 探針
我們可提供兩種類型的applied biosystems™ taqman® 探針：
taqman探針（含有invitrogen™ tamra™染料——淬滅染料基團(tuán)）applied biosystems™ taqman® mgb探針*用于等位基因檢測(cè)的 taqman mgb 探針
我們一般*使用taqman mgb探針進(jìn)行等位基因分型分析，特別是當(dāng)傳統(tǒng)taqman探針超過(guò)30個(gè)核苷酸時(shí)。taqman mgb探針包含：
位于3 '端的非熒光淬滅基團(tuán)——由于淬滅基團(tuán)不發(fā)出熒光，因此sds儀可以更地檢測(cè)出報(bào)告基因染料 。位于3’ 端的小溝結(jié)合物 – 小溝結(jié)合物可提高探針的熔解溫度（tm），縮短探針的長(zhǎng)度。終，taqman mgb 探針會(huì)在匹配和未匹配探針之間展現(xiàn)出更大的 tm 值差異，從而提供更準(zhǔn)確的等位基因分型。
taqman 方法的優(yōu)點(diǎn)
taqman方法的優(yōu)點(diǎn)如下：
需要在探針和目標(biāo)分子（靶點(diǎn)）之間發(fā)生特異性的水解（雜交），方可生成熒光信號(hào)您可使用明顯不同的報(bào)告基因染料標(biāo)記探針，在一個(gè)反應(yīng)管內(nèi)擴(kuò)增并檢測(cè)兩個(gè)不同的序列無(wú)需pcr后處理，減少分析工作量并節(jié)省材料成本。taqman方法的缺點(diǎn)：
taqman方法的主要缺點(diǎn)在于需要根據(jù)不同的序列，合成不同的探針。
sybr green i染料試劑背景
一般將可與雙鏈dna發(fā)生結(jié)合的小分子分為以下兩類：
嵌入劑小溝結(jié)合物無(wú)論哪種結(jié)合方法，用于pcr實(shí)時(shí)檢測(cè)的dna結(jié)合染料都需要滿足以下兩個(gè)條件：
結(jié)合至雙鏈dna時(shí)，會(huì)有增強(qiáng)的熒光對(duì) pcr 不會(huì)產(chǎn)生抑制我們開(kāi)發(fā)更加優(yōu)化的條件，使得sybr green i染料的使用不會(huì)對(duì)pcr產(chǎn)生抑制并帶來(lái)相對(duì)于溴化乙錠更為靈敏的檢測(cè)。
sybr green i染料法的工作原理
sybr green i染料法通過(guò)sybr green i染料與pcr過(guò)程中產(chǎn)生的雙鏈dna結(jié)合，而對(duì)聚合酶鏈反應(yīng)（pcr）的產(chǎn)物進(jìn)行檢測(cè)。工作原理：
步驟、過(guò)程
當(dāng)sybr green i染料被加入到樣品中后，它可立即與樣品中的雙鏈dna進(jìn)行結(jié)合 。
在pcr過(guò)程中，applied biosystems™ amplitaq gold™dna聚合酶可對(duì)目標(biāo)序列進(jìn)行擴(kuò)增，以產(chǎn)生pcr產(chǎn)物，即“擴(kuò)增子”。隨后，sybr green i染料會(huì)與每一個(gè)新產(chǎn)生的雙鏈dna分子進(jìn)行結(jié)合。隨著pcr的進(jìn)行，越來(lái)越多的擴(kuò)增子被生成。由于sybr green i染料可與所有的雙鏈dna結(jié)合，因此熒光強(qiáng)度也會(huì)隨著pcr產(chǎn)物的增加而增加。sybr green i染料法的優(yōu)點(diǎn)
sybr green i染料法的優(yōu)點(diǎn)如下：
它可用于監(jiān)測(cè)任何雙鏈 dna 序列的擴(kuò)增。無(wú)需探針，降低了檢測(cè)的設(shè)置和運(yùn)行成本。sybr green i染料法的缺點(diǎn)：
sybr green i染料法的大缺點(diǎn)在于可能會(huì)產(chǎn)生假陽(yáng)性信號(hào)；即，因?yàn)閟ybr green i染料可與任何的雙鏈dna發(fā)生結(jié)合，因此也會(huì)與非特異性的雙鏈dna序列發(fā)生結(jié)合。
其他注意事項(xiàng)
采用dna結(jié)合染料的另一原因，是多重染料與單一擴(kuò)增分子的結(jié)合。這可提高擴(kuò)增產(chǎn)物檢測(cè)的靈敏度?；诙嘀厝玖系慕Y(jié)合，將迎來(lái)信號(hào)量取決于在反應(yīng)中所產(chǎn)生的雙鏈dna量的局面。因此，如果擴(kuò)增效率相同，相較于對(duì)較短產(chǎn)物的擴(kuò)增，對(duì)較長(zhǎng)產(chǎn)物的擴(kuò)增將會(huì)產(chǎn)生更多的信號(hào)。這*不同于熒光探針，使用熒光探針時(shí)，對(duì)于每個(gè)合成的擴(kuò)增分子淬滅僅釋放一個(gè)熒光基團(tuán)，與其長(zhǎng)短并不相關(guān)。
關(guān)于定量檢測(cè)什么是定量檢測(cè)？
定量檢測(cè)是一種實(shí)時(shí)的pcr (qpcr) 檢測(cè)。測(cè)量（定量）每輪pcr擴(kuò)增循環(huán)中，檢測(cè)目標(biāo)核酸片段的量。目標(biāo)分子可以為dna、cdna或rna。此方法指南主要對(duì)以下三種定量檢測(cè)進(jìn)行討論：
dna/cdna定量采用一步法逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)（rt-pcr）的rna定量采用兩步法rt-pcr的rna定量定量分析常見(jiàn)術(shù)語(yǔ)
擴(kuò)增子：pcr過(guò)程而產(chǎn)生的dna短片段
擴(kuò)增曲線：根據(jù)熒光信號(hào)相對(duì)于循環(huán)數(shù)而制作的曲線
基線：pcr起始時(shí)，熒光信號(hào)還未發(fā)生變化的幾個(gè)循環(huán)
ct（閾值循環(huán)）：熒光信號(hào)超過(guò)ntc（無(wú)模板對(duì)照樣品）固定閾值時(shí)的循環(huán)數(shù) 。用于對(duì)擴(kuò)增質(zhì)量進(jìn)行驗(yàn)證。
核酸目標(biāo)：（也稱為“目標(biāo)模板”）——需要擴(kuò)增的dna或rna序列
惰性參比染料：一種可作為內(nèi)部對(duì)照，以用于在數(shù)據(jù)分析時(shí)對(duì)報(bào)告基團(tuán)染料信號(hào)進(jìn)行均一化的染料。均一化是對(duì)因濃度或體積變化而隨之引起波動(dòng)進(jìn)行的必要校正。所有的sds pcr試劑盒都提供了參比熒光對(duì)照。
rn（均一化報(bào)告基團(tuán)）：報(bào)告基團(tuán)染料釋放的熒光強(qiáng)度除以惰性參比染料釋放的熒光強(qiáng)度
rn+:一次反應(yīng)的rn值包含所有的組分，包括模板
rn-：未反應(yīng)樣品的rn值。rn值可通過(guò)以下方式獲取：
實(shí)時(shí)熒光定量pcr (qpcr) 運(yùn)行的早期循環(huán)（產(chǎn)生可被檢測(cè)的熒光信號(hào)之前的循環(huán)），或不含有任何模板的反應(yīng)δrn (delta rn):在特定pcr條件設(shè)置下所產(chǎn)生的信號(hào)量級(jí)。
δrn可通過(guò)以下公式計(jì)算：(rn+) – (rn-)標(biāo)準(zhǔn)品 具有已知濃度的a樣本，用于繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。通過(guò)使用不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)品，您可構(gòu)建用于未知樣品定量分析的標(biāo)準(zhǔn)曲線。
閾值：早期pcr循環(huán)時(shí)rn值的平均標(biāo)準(zhǔn)差，乘以相應(yīng)的校正系數(shù)閾值應(yīng)當(dāng)設(shè)定在pcr指數(shù)擴(kuò)增時(shí)的相關(guān)區(qū)域。
未知：具有未知模板量的樣品。即，您需要進(jìn)行檢測(cè)的樣品。
實(shí)時(shí)pcr (qpcr) 定量檢測(cè)工作原理
在pcr的起始循環(huán)中，熒光信號(hào)幾乎不發(fā)生變化。從而定義為擴(kuò)增曲線中的基線。而超出基線部分的熒光的增加，則為對(duì)累計(jì)目標(biāo)分子的檢測(cè)。固定的熒光閾值線，可設(shè)置在基線之上。熒光超過(guò)固定閾值時(shí)的循環(huán)數(shù)則為參數(shù)ct（閾值循環(huán)）。
與相對(duì)定量概述
當(dāng)對(duì)定量檢測(cè)的結(jié)果進(jìn)行計(jì)算時(shí)，可以采用或相對(duì)定量。
什么是定量？
定量檢測(cè)是根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線對(duì)未知樣品進(jìn)行的定量。
示例
定量可根據(jù)病毒的拷貝數(shù)，監(jiān)控疾病狀態(tài)。研究者須知道特定生物學(xué)樣品中目標(biāo)rna分子的準(zhǔn)確拷貝數(shù)，以對(duì)疾病的進(jìn)展進(jìn)行監(jiān)測(cè)。定量可通過(guò)從所有sds儀器獲取的數(shù)據(jù)進(jìn)行，但注意標(biāo)準(zhǔn)品的定量則須首先通過(guò)其他方法獲取。
什么是相對(duì)定量？
相對(duì)定量用于分析特定樣品相對(duì)于參照樣品（比如，未處理的對(duì)照組）某個(gè)基因表達(dá)量的變化。
示例
相對(duì)定量可用于檢測(cè)化合物（藥物）引起的基因表達(dá)改變。經(jīng)化學(xué)處理樣品中的特定目標(biāo)基因的表達(dá)水平可與相對(duì)未處理樣品中的基因表達(dá)水平進(jìn)行比較。
相對(duì)定量的計(jì)算方法
相對(duì)定量可根據(jù)從所有sds儀器獲取的數(shù)據(jù)而進(jìn)行。用于相對(duì)定量的計(jì)算方法有：
標(biāo)準(zhǔn)曲線法比較ct法確定使用哪種方法所有方法都可產(chǎn)生同等的結(jié)果。當(dāng)在確定使用哪種方法時(shí)，需要注意：
在不同的反應(yīng)管中進(jìn)行目標(biāo)分子和內(nèi)源性對(duì)照的擴(kuò)增時(shí)，采用標(biāo)準(zhǔn)曲線法進(jìn)行分析，所需優(yōu)化和驗(yàn)證操作少。采用比較ct法時(shí)，則須進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)，以表明目標(biāo)分子和內(nèi)源性對(duì)照擴(kuò)增的效率基本相同。比較ct法的優(yōu)勢(shì)在于無(wú)需標(biāo)準(zhǔn)曲線，從而可以實(shí)現(xiàn)通量提高（因?yàn)闊o(wú)需額外的孔用于標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制）；并消除在進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制時(shí)因稀釋錯(cuò)誤所帶來(lái)的不利結(jié)果。如需將靶標(biāo)和內(nèi)源性對(duì)照品在同一管內(nèi)進(jìn)行擴(kuò)增，則須優(yōu)化并限制引物的濃度以避免對(duì) ct 值產(chǎn)生影響。當(dāng)在一管中進(jìn)行雙重反應(yīng)時(shí)，可以提高通量并減少移液失誤所帶來(lái)的不利影響。常用術(shù)語(yǔ)
和相對(duì)定量中常用的術(shù)語(yǔ)，如下：
標(biāo)準(zhǔn)：用于構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)曲線的已知濃度樣品。
參考文獻(xiàn)：用于對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行均一化的陰性或陽(yáng)性信號(hào)。內(nèi)源性和外源性對(duì)照是常見(jiàn)的陽(yáng)性對(duì)照。陽(yáng)性對(duì)照指的是因pcr擴(kuò)增而產(chǎn)生的信號(hào)。陽(yáng)性對(duì)照則具有自己的引物和探針組合。
內(nèi)源性對(duì)照：指的是，在每個(gè)樣品進(jìn)行提取時(shí)便已存在于樣品中的rna或dna。當(dāng)采用內(nèi)源性對(duì)照作為陽(yáng)性對(duì)照時(shí)，您可通過(guò)對(duì)信使rna（mrna）的均一化定量來(lái)消除每次反應(yīng)中加入的總rna量的差異。
外源性對(duì)照：指的是，在每個(gè)樣品中加入的具有已知濃度的特殊rna或dna。外源性陽(yáng)性對(duì)照通常是來(lái)自可以作為內(nèi)部陽(yáng)性對(duì)照（ipc）的體外成分，可區(qū)分真正的目標(biāo)陰性和pcr抑制。此外，外源性對(duì)照還可均一化樣品提取或逆轉(zhuǎn)錄中互補(bǔ)dna（cdna）合成的效率差異。無(wú)論是否使用陽(yáng)性對(duì)照，使用含有rox染料的參比熒光對(duì)照都是十分重要的，因?yàn)樗梢詫?duì)非pcr相關(guān)的熒光信號(hào)波動(dòng)進(jìn)行均一化。
目標(biāo)分子的均一化量：一個(gè)可以用于比較不同樣品中目標(biāo)分子相對(duì)量的無(wú)單位數(shù)字。
校準(zhǔn)品：可以用作比較結(jié)果基礎(chǔ)的樣品。
用于相對(duì)定量的標(biāo)準(zhǔn)曲線法概述
因采用的是相對(duì)于基礎(chǔ)樣品的表達(dá)量，例如校準(zhǔn)品，用于相對(duì)定量的標(biāo)準(zhǔn)曲線一般都比較容易繪制。對(duì)于所有的實(shí)驗(yàn)樣品，其目標(biāo)分子的量均是從標(biāo)準(zhǔn)曲線獲取，然后除以校準(zhǔn)品的目標(biāo)分子量而確定的。因此，校準(zhǔn)品便成為1 x 樣品，而所有其他的量則都為以n倍校準(zhǔn)品來(lái)表示。例如，在研究藥物對(duì)表達(dá)產(chǎn)生的影響時(shí)，未處理的對(duì)照樣品便是合理恰當(dāng)?shù)男?zhǔn)品。
關(guān)鍵指南
以下指南可為相對(duì)定量中標(biāo)準(zhǔn)曲線的正確使用，提供關(guān)鍵指導(dǎo)：
rna或dna儲(chǔ)存液的準(zhǔn)確稀釋是十分重要的，但用于表達(dá)稀釋的單位是無(wú)關(guān)的。如果對(duì)來(lái)自對(duì)照細(xì)胞系的總rna進(jìn)行了2倍的稀釋后進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制，則單位應(yīng)該是稀釋值1、0.5、0.25、0.125等。如果使用相同的 rna 或 dna 儲(chǔ)存液進(jìn)行不同板上的標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制，則可在不同板之間比較確定的相對(duì)定量。也可使用dna標(biāo)準(zhǔn)曲線進(jìn)行rna的相對(duì)定量。這么做需要假設(shè)目標(biāo)分子在所有樣品中的逆轉(zhuǎn)錄效率都是相同的，但并不需要知道效率的值。在采用內(nèi)源性對(duì)照進(jìn)行定量均一化時(shí)，應(yīng)該對(duì)目標(biāo)分子和內(nèi)源性對(duì)照都進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制。對(duì)于每一個(gè)實(shí)驗(yàn)樣品，目標(biāo)分子和內(nèi)源性對(duì)照的量都是根據(jù)合適的標(biāo)準(zhǔn)曲線而確定的。因此，目標(biāo)分子的量除以內(nèi)源性對(duì)照的量便是均一化后的目標(biāo)分子值。同樣的，其中的一個(gè)實(shí)驗(yàn)樣品便是校準(zhǔn)品，或1×樣品。每一個(gè)均一化的目標(biāo)分子值除以校準(zhǔn)品的均一化值后便是相對(duì)的表達(dá)水平。內(nèi)源性對(duì)照
對(duì)于內(nèi)源性對(duì)照進(jìn)行擴(kuò)增可用于對(duì)加入至反應(yīng)的樣品rna或dna的量進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化。對(duì)于基因表達(dá)定量，研究者采用過(guò) ß-肌動(dòng)蛋白、甘油醛-3-磷酸脫氫酶（gapdh）、核糖體rna（rrna）或其他rna作為內(nèi)源性對(duì)照。
標(biāo)準(zhǔn)品
由于樣品量會(huì)除以校準(zhǔn)品的量，則標(biāo)準(zhǔn)曲線中的單位便被去除了。因此，對(duì)于標(biāo)準(zhǔn)品來(lái)說(shuō)所有需要知道的只是它們的相對(duì)稀釋比。對(duì)于相對(duì)定量，任何含有合適目標(biāo)分子的rna或dna儲(chǔ)存液都可用作標(biāo)準(zhǔn)品。
用于相對(duì)定量的比較ct法比較ct法與標(biāo)準(zhǔn)曲線法相似，只是它利用的是算術(shù)公式2−δδct來(lái)獲取相同的相對(duì)定量結(jié)果。
算術(shù)公式：
為了有效地利用比較 ct 法，目標(biāo)分子（基因）和對(duì)照（內(nèi)源性對(duì)照）的擴(kuò)增效率應(yīng)當(dāng)近似相同。
更多關(guān)于使用比較ct法進(jìn)行相對(duì)定量的信息，請(qǐng)參閱用戶手冊(cè)#2：基因表達(dá)的相對(duì)定量（pn4303859）。
用于定量的標(biāo)準(zhǔn)曲線法概述
用于定量的標(biāo)準(zhǔn)曲線法與用于相對(duì)定量的標(biāo)準(zhǔn)曲線法類似，只是標(biāo)準(zhǔn)品的量必須首先通過(guò)其他獨(dú)立方法獲取。
關(guān)鍵指南
下面的指南對(duì)于定量中標(biāo)準(zhǔn)曲線的正確使用十分關(guān)鍵：
來(lái)自單一、純凈物種的dna或rna是十分重要的。例如，從大腸桿菌制備的質(zhì)粒dna通常都會(huì)存在rna的污染，這會(huì)增加a260的讀數(shù)而增加質(zhì)粒的拷貝數(shù)計(jì)算結(jié)果。準(zhǔn)確的移液是必需的因?yàn)闃?biāo)準(zhǔn)品需要經(jīng)過(guò)不同的數(shù)量級(jí)的順序稀釋。質(zhì)粒dna或體外轉(zhuǎn)錄的rna必須被濃縮以便獲取準(zhǔn)確的a260測(cè)量值。濃縮的dna或rna隨后必須被稀釋106–1012倍以獲得與生物學(xué)樣品中目標(biāo)分子相似的濃度。稀釋的標(biāo)準(zhǔn)品的穩(wěn)定性也需要引起注意，特別是對(duì)于 rna。將稀釋的標(biāo)準(zhǔn)品分裝至多份，儲(chǔ)存在-80°c，并僅在使用前才進(jìn)行解凍。無(wú)法使用dna作為rna定量的標(biāo)準(zhǔn)品，因?yàn)閷?duì)于逆轉(zhuǎn)錄過(guò)程的效率沒(méi)有對(duì)照。
標(biāo)準(zhǔn)品
標(biāo)準(zhǔn)品的量必須首先通過(guò)其他獨(dú)立的方法獲取。質(zhì)粒 dna 和體外轉(zhuǎn)錄的 rna 通常用于制備標(biāo)準(zhǔn)品。濃度可在a260處被測(cè)量得到，并通過(guò)使用dna或rna的分子量轉(zhuǎn)化成拷貝數(shù)。